![]()
42
| 2 | 2009
Klinisk Biokemi i Norden
naderna mellan metoderna uppenbarligen genom
metoddesign och kalibrering. Däremot förklaras
skillnader i klinisk specifitet knappast enbart av kali-
breringen. I Architect CA 19-9XR-metoden tillämpas
två-stegs inkubering, medan Elecsys och Immuno
1 metoderna är en-stegs-metoder. Dessutom skiljer
sig metoderna beträffande märkesämnen och solida
faserna. Muciner av varierande storlek bärande CA
19-9-epitopen förekommer i olika sjukdomar [28,
29] och det är möjligt att detektionen av de olika
CA 19-9-formerna är metodberoende. Den sialy-
lerade lakto-N-fucopentaos II-epitopen som 1116-
NS-19-9 antikroppen definierar är besläktad med en
Lewis-blodgruppsdeterminant, och Lewis-negativa
personer (5-9% av den kaukasiska befolkningen)
kan inte producera antigenet. Den övre referens-
gränsen för CA 19-9 varierar sexfaldigt (7.9-50.6
kU/L) enligt blodgruppsgenotyp [26]. Det är möjligt,
att CA 19-9-negativa patienter med pankreascancer
representerar Lewis-negativa fall. Lewis blodgrup-
pen beaktas inte rutinmässigt i tolkningen av CA
19-9-koncentrationer på vårt sjukhus, och vi hade
inte tillgång till denna information.
Som konklusion kan man konstatera att de stude-
rade metodernas resultat för individuella patienter
skiljer sig klart, och därför är det viktigt att fastställa
en basnivå för koncentrationerna i samband med
metodbyte under patientuppföljningen. Metodernas
kapacitet att skilja mellan maligna och benigna sjuk-
domar var likaså olika men metoden på Architect
framstår som den bästa. En övre referensgräns på 26
kU/L för Architect CA 19-9XR-metoden motsvarar
36 kU/L med Elecsys. Med en cut-off omkring 37
kU/L för alla tre metoder får man ändå den bästa
validiteten för differentiering mellan benigna och
maligna GI-sjukdomar.
Vi tackar
Denna studie understöddes av Stockmanns stiftelse,
Finska Läkaresällskapet och Helsingfors Universitet.
Vi tackar Abbott Laboratories, Diagnostisk Division,
för reagenser.
Förkortningar
CA, carbohydrate antigen; GI, gastrointestinal; AUC,
area under curve; ROC, receiver operating characte-
ristics
Referenss
[1] Koprowski H, Steplewski Z, Mitchell K, Her-
lyn M, Herlyn D, Fuhrer P. Colorectal carci-
noma antigens detected by hybridoma anti-
bodies. Somatic Cell Genet 1979;5: 957–71.
[2] Magnani JL, Steplewski Z, Koprowski H,
Ginsburg V. Identification of the gastro-
intestinal and pancreatic cancer-associated
antigen detected by monoclonal antibody
19-9 in the sera of patients as a mucin. Can-
cer Res 1983;43:5489–92.
[3] Molina R, Santabarbara P, Filella X, Mengual
P, Ballesta A, Balague A. Relationship of CA
125 and CA 19.9 with lung carcinoma histo-
logical subtype: preliminary study.. Int J Biol
Markers 1989;4:215-20.
[4] Molina R, Ojeda B, Filella X, et al. A pro-
spective study of tumormarkers CA 125 and
CA 19.9 in patients with epithelial ovarian
carcinomas. Tumour Biol 1992;13:278–86.
[5] Loy T, Sharp S, Ochershock C, Craig S. Dist-
ribution of CA 19-9 in adenocarcinomas and
transitional cell carcinomas. An immunohi-
stochemical study of 527 cases. Am J Clin
Pathol 1996;99:726-8.
[6] Borras G, Molina R, Xercavins J, Ballesta A,
Iglesias J. Tumor antigens CA 19.9, CA 125,
and CEA in carcinoma of the uterine cervix.
Gynecol Oncol 1995;57:205–11.
[7] Dietel M, Arps H, Klapdor R, Muller-Hagen
S, Sieck M, Hoffmann L. Antigen detec-
tion by the monoclonal antibodies CA 19-9
and CA 125 in normal and tumor tissue
and patients’ sera. J Cancer Res Clin Oncol
1986;111:257–65.
[8] Aybek H, Aybek Z, Sinik Z, Demir S, Sancak
B, Tuncay L. Elevation of serum and urinary
carbohydrate antigen 19-9 in benign hydro-
nephrosis. Int J Urol 2006;13: 1380–4.
[9] Marechal F, Berthiot G, Deltour G. Serum
levels of CA-50, CA-19.9, CA-125, CA-15.3,
enolase and carcino-embryonic antigen in
non neoplastic diseases of the lung. Antican-
cer Res 1988;8:677–80.
[10] Tsavaris N, Mavragani CP, Pikazios D.
Rheumatoid arthritis: correlation bet-
ween rheumatoid factor levels and CA-125
(Fortsat fra side 40)
